매크로-마이크로 워크플로를 통해 매크로 수준(전신 또는 조직)에서 세포 또는 세포 내 수준까지 표적 샘플을 쉽게 관찰할 수 있습니다.

고품질의 고속 타임랩스 컨포컬 이미징

사용자와 시스템 간 재현 가능한 이미지 데이터

SilVIR 검출기는 이전 세대 검출기 기술에 비해 시간 경과에 따른 감도 손실이 적습니다. Evident의 레이저 출력 모니터(LPM) 및 TruFocus™ Z 드리프트 보상기를 사용하면 일관된 조건에서 재현 가능한 이미지를 얻어 재현성을 높일 수 있습니다. 다른 날, 다른 사용자도 동일한 설정을 사용하면 동일한 정밀 이미지를 얻을 수 있습니다. 서로 다른 FV4000 현미경으로 획득한 이미지도 동일한 광자수 강도 척도를 사용하여 비교할 수 있습니다.

신뢰할 수 있는 현미경 지원 및 서비스

Evident는 유지보수가 쉽도록 FV4000 시스템을 설계했습니다.

• 반도체 기반 SilVIR 검출기는 안정적이고 내구성이 뛰어납니다.
• 레이저 출력 모니터는 조명 상태를 지속적으로 확인하고 일정한 레이저 출력을 유지하도록 조정합니다.
• 시스템 관리자는 로그 파일을 보고 서비스 유지보수 일정을 추적할 수 있습니다.

Evident는 신속한 서비스와 기술 지원에 대한 약속을 바탕으로 제품을 지원합니다. Evident는 현미경이 예측 가능한 비용으로 최고의 성능을 발휘할 수 있도록 다양한 지원 계획과 원격 지원 옵션을 제공하므로 문제가 있는 경우 엔지니어나 전문가가 방문할 때까지 기다릴 필요가 없습니다.

NIR 지원 컨포컬 현미경으로 더 많은 정보 발견

시스템의 향상된 기술은 하나의 이미지에서 더 많은 정보를 발견할 수 있도록 확장된 멀티플렉싱을 제공했습니다.

NIR 이미징은 FV4000 시스템의 여기(λ_Ex) 및 검출(λ_Em) 스펙트럼 프로파일을 확장하여 더욱 우수한 멀티플렉싱 기능을 제공합니다. 따라서 중첩되는 방출 신호를 최소화하는 데 도움이 되는 염료를 추가로 사용할 수 있습니다.

• 업데이트된 TruSpectral™ 기술과 Evident의 고감도 SilVIR™ 검출기를 사용하여 최대 6개 채널 멀티플렉싱
• 고효율 볼륨 위상 홀로그램(VPH) 회절 격자 및 슬릿을 통해 최소 1nm 단위로 업계 최고 수준의 400nm~900nm 파장 범위 감지 가능
• 최대 6개 채널의 광대역 또는 적색편이 검출기로 형광색소 선택지를 확대하여 손상을 최소화하고 자가형광을 최소화
• 모듈식 레이저 결합기가 405nm~785nm 범위의 레이저 라인을 최대 10개까지 동시에 허용 

6가지 형광색소로 표지된 헬라(HeLa) 세포
세포 핵(DAPI, 파란색), 세포막(AF488, 녹색), 핵공(AF561, 노란색),
미세소관(Qdot605, 자홍색), 미토콘드리아(MitoTracker DeepRed, 청록색), 액틴(AF750 팔로이딘, 회색).

효율적인 NIR 형광 이미징을 위한 고품질 광학 기기

FV4000 시스템의 광학 요소는 알루미늄이 아닌 은으로 코팅된 검류계 및 공진 스캐너를 포함하여 400nm~1300nm 범위의 높은 투과율을 갖습니다.

수상 경력에 빛나는 X Line™ 대물렌즈는 400nm~1000nm 사이의 색수차를 보정합니다. 또한 더 높은 개구수와 탁월한 평탄도를 갖췄을 뿐만 아니라 UV에서 NIR까지의 투과율이 매우 높아 멀티플렉싱 기능이 향상됩니다.

공동 국소화의 신뢰성 향상을 위해 Evident의 특수 A Line™(PLAPON60XOSC2) 오일 침지 대물렌즈(ne~1.40)는 엄격한 공동 국소화 분석을 위해 색수차를 최소화합니다.

고품질의 컨포컬 이미지를 빠르게 획득

고급 기술을 고유하게 조합하여 사용하면 기존의 레이저 스캐닝 현미경 시스템보다 더 빠르게 고품질의 이미지를 획득할 수 있습니다.

• 고해상도 이미지를 고속으로 획득: 픽셀당 0.033µs를 지원하는 FN20의 1K × 1K 공진 스캐너와 SilVIR 검출기를 사용하면 최소한의 노이즈로 이미지를 빠르게 획득할 수 있습니다.
• 탁월한 품질의 매크로 이미지: 뛰어난 품질의 스티칭된 매크로 이미지를 빠르게 획득하여 시간과 연구 잠재력을 극대화할 수 있습니다.

1K 공진 스캐너를 사용하여 스티칭된 이미지를 생성하는 경우 총 77개의 4채널 XYZ 지점(11 × 7)을 16분 이내에 획득했습니다(검류계 스캐너를 사용하는 경우 2시간이 소요됨). H 라인 마우스 뇌의 관상 단면: 청록색(DAPI, 세포 핵), 녹색(YFP, 뉴런), 노란색(Cy3, 성상세포), 자홍색(AlexaFluor 750, 미세소관). 샘플 제공: Takako Kogure 및 Atsushi Miyawaki, RIKEN CBS 세포 기능 역학부.

간단하고 정확한 초고해상도 이미징

전용 하드웨어 없이 FV4000 현미경을 사용하여 초고해상도 이미지를 캡처합니다.

• A Line HR 대물렌즈와 초고해상도 소프트웨어(FV-OSR)을 사용하여 세포 내 구조를 손쉽게 관찰
• FV-OSR은 컨포컬 조리개를 자동으로 최적화하여 고주파 성분을 감지하고 대비를 향상시켜 120nm의 해상도 획득
• SilVIR 검출기와 실시간 처리 덕분에 이전 세대 시스템보다 8배 빠른 초고해상도 이미지 획득

두꺼운 샘플의 고해상도 3D 이미지

두꺼운 샘플을 이미징할 때 FV4000 현미경을 사용하면 고해상도 3D 이미지를 캡처할 수 있습니다.

• SilVIR 검출기의 넓은 동적 범위와 감도를 통해 NIR의 더 긴 파장을 활용하여 깊숙이 침투
• 멜라닌 및 헴(heme) 등의 광산란 화합물이 700nm~1500nm 사이의 빛을 덜 흡수한다는 점을 활용하여 산란 및 흡수가 더 적은 깊이 있는 이미지 획득 가능
• FV4000의 685nm, 730nm, 785nm 다이오드 레이저 덕분에 가시 레이저에 비해 훨씬 더 깊이 있는 이미지 획득 가능
• 높은 개구수의 실리콘 대물렌즈는 구면 수차를 최소화하고 마르지 않는 실리콘 오일로 타임랩스 이미지에 유용
• 두꺼운 샘플에서 탁월한 3D 이미지를 얻기 위해 TruSight™ 디콘볼루션을 사용하여 전체 이미지 품질과 Z 해상도 개선
• 특수 cellSens™ 소프트웨어 알고리즘을 사용하여 이미지 획득부터 출판까지 원활한 워크플로 실현

DAPI(청록색, 세포 핵) 및 AlexaFluor790(자홍색, i-67)로 표지된 헬라 세포 스페로이드. NIR 785nm에서는 스페로이드의 전체 볼륨에 대한 이미징이 가능했지만, 405nm 레이저에서는 표면적 세포 핵 관찰만 가능했습니다.

타임랩스 광 자극: C2C12 세포에서 레이저 손상이 수행되었습니다. 녹색 의사색상은 FM 1-43 항온수조가 적용되었음을 나타냅니다. 이미지는 2μs galvo 스캐너와 UPLSAPO60XOHR 대물렌즈를 사용하여 획득했습니다. 광손상에는 405 nm 레이저가 사용되었고 이미징에는 488nm 레이저가 사용되었습니다. 샘플 제공: Daniel Bittel 및 Jyoti Jaiswal, Children’s National Research Institute의 의학유전연구 센터(Center for Genetic Medicine Research).

Hoechst33342(핵, 파란색), MitoTracker Green(미토콘드리아, 녹색), LysoTracker Red(리소좀, 노란색), SiR-Tubulin(튜불린, 자홍색), POR-SA-Halo(ER, 청록색)으로 염색된 헬라 세포의 타임랩스 이미지. Hoechst33342: Ex 405nm/Em, MitoTracker Green: LysoTrakcer Red: SiR-Tubulin: POR-SA-Halo: 샘플 제공: Masayasu Taki, Ph.D., 일본 나고야 대학(Nagoya University)의 Institute of Transformative Bio-Molecules(WPI-ITbM), Yuichi Asada 및 Ryusei Aruga, 일본 나고야 대학(Nagoya University) 대학원 이학부.

MitoTracker Red(미토콘드리아, 자홍색), POR-SA-Halo(ER, 청록색)으로 염색된 타임랩스 이미지(17시간 촬영). MitoTracker Red: Ex 561nm/Em, POR-SA-Halo: Ex 730nm/Em, 샘플 제공: Masayasu Taki, Ph.D., 일본 나고야 대학(Nagoya University)의 Institute of Transformative Bio-Molecules(WPI-ITbM), Yuichi Asada 및 Ryusei Aruga, 일본 나고야 대학(Nagoya University) 대학원 이학부.

선명한 심부 이미지

FV4000 현미경과 함께 Evident의 실리콘 침지 대물렌즈를 사용하면 샘플 내부의 특징과 심부 구조에 대한 선명한 이미지를 얻을 수 있습니다. 실리콘 오일의 굴절률은 생세포나 조직의 굴절률과 유사해 공기, 물, 기타 오일에 비해 구면 수차가 크게 줄어듭니다. 수차가 적기 때문에 샘플의 심부에서 더 선명한 이미지를 얻을 수 있습니다. 그리고 실리콘 침지 오일은 37℃(98.6°F)에서도 마르지 않아 장시간의 타임랩스 이미징에 효과적입니다.

컨포컬 이미징을 한 단계 더 높은 수준으로 끌어올려 데이터 분석 시간을 절약해 보세요. 현미경의 신호 대 잡음비도 매우 우수하지만 TruAI™ 노이즈 제거 기술은 압도적으로 데이터가 풍부한 공명 이미지를 획득하기 위해 노이즈를 더욱 줄일 수 있습니다.

이미지 분석 속도를 높이기 위해 시스템이 자동으로 이미지 데이터를 분할할 수 있도록 AI 모델을 사전에 훈련하면 시간이 많이 걸리는 수동 프로세스의 작업 부하를 크게 줄일 수 있습니다. 그리고 TruAI 기술은 분석을 더욱 간소화하므로 데이터를 빠르게 얻을 수 있습니다.

TruAI 노이즈 감소

TruAI 노이즈 감소 기능을 통합하여 공진 스캐너 이미지 품질을 높일 수 있습니다. 공진 스캐너 이미지는 손상을 최소화하면서 빠르게 세포 역학을 포착하는 데 효과적이지만, 이로 인해 S/N 비율이 저하됩니다. TruAI 노이즈 감소 기능은 SilVIR™ 검출기의 노이즈 패턴을 기반으로 선행 훈련된 신경망을 사용하여 시간 해상도는 그대로 유지하면서 이미지 품질을 개선할 수 있습니다. 이러한 선행 훈련된 TruAI 노이즈 감소 알고리즘은 실시간 처리는 물론 사후 처리에도 사용할 수 있습니다.

뇌 샘플: DAPI(핵, 청록색), GFAP(성상세포, 녹색/488), MAP2(미세소관 관련 단백질 2, 뉴런 및 수상돌기, 청록색/647), MBP(미엘린 염기성 단백질, 빨간색/568)로 염색된 마우스 뇌의 관상 단면(50μm). 샘플 제공: 샘플 준비 Alexia Ferrand, 샘플 획득 Sara R. Roig 및 Alexia Ferrand. 바젤 대학교(University of Basel) 바이오센터(Biozentrum)의 이미징 코어 시설(maging Core Facility).

1K 공진 스캐너를 사용하여 획득한, MitoView 720으로 표지된 헬라 세포 미토콘드리아. 최대 광자수는 3광자였습니다.

TruAI 이미지 분할

이미지 분석에는 강도 값 임계값을 기반으로 하는 분할 기술을 사용한 데이터 추출이 필요합니다. 그러나 이렇게 하면 시간이 오래 걸리고 시료 상태에 영향을 줄 수 있습니다.

딥러닝을 활용한 TruAI 이미지 분할은 이미지 처리를 간소화하고 샘플 분산을 최소화하여 보다 정확한 이미지 분석을 지원합니다. 매우 약한 형광 이미지나 간단한 임계값 설정 방법을 사용하여 추출하기 어려운 조직을 분할할 수 있습니다.

스캐너	검류계 스캐너	64 × 64 ~ 4096 × 4096픽셀, 1μs/픽셀 ~ 1000 μs/픽셀
	(일반 이미징)
	공진 스캐너	512 × 512픽셀, 1024 × 1024픽셀
	(고속 이미징)
	시야수(FN)	20
스펙트럼 컨포컬 검출기	검출기	SilVIR 검출기(냉각형 SiPM, 광대역 유형/적색편이 유형)
	최대 채널수	6개 채널
	스펙트럼 방식	VPH, 검출 가능한 파장 범위 400nm~900nm
레이저	VIS 레이저	405nm, 445nm, 488nm, 514nm, 561nm, 594nm, 640nm
	NIR 레이저	685nm, 730nm, 785nm
	레이저 출력 모니터	내장형
이미지	높은 동적 범위 광자 계수(1G cps, 16비트)